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体内/体外实验设计中抑制剂的添加

ED50，Ki50，IC50，Kd50和pIC50各指什么?它们有什么区别
药理和生化研究中，以下一些术语常常被用来描述药物或抑制剂的功效;有时如果研究者没有弄清原文献作者使用的术语的确切含义，在重复这些实验时会产生困扰。 EC50值:药物达到最大临床功效(有时是抑制或刺激效果)50%时的浓度。这是一个药用术语。 ED50值:50%的个体表现特定药效时药物的有效剂量(而非浓度)。
IC50值: 达到50%抑制效果时抑制剂的浓度。
Ki50值: 检测到50%抑制效果时的抑制剂的浓度(采用Michaelis-Menten动力学计算而获得)。
Kd50值:二个或更多生物分子组成的复合物分离成组分时的平衡常数;例如，抑制剂或底物从酶分离时的pIC50值。
pIC50值:IC50值的10的负对数。

2. 体外实验中需要加多少抑制剂?
通常建议客户参考同模型实验发表的文献报道；
除参考文献报道以外，还需要通过预实验做“剂量-效应曲线”确定最佳作用浓度（浓度梯度）；通过“时间-效应曲线”确定最佳孵育时间（处理时间梯度）。
另外，抑制剂的使用量受多种因素影响，包括抑制对象的可接触性，细胞通透性，孵育时间，细胞种类等等。我们建议通过检索文献确定使用抑制剂的起始浓度。如果有报道的Ki值或IC50值，可以采用其5-10 倍的量开始尝试以达到抑制酶活性的最佳效果。如果抑制剂的Ki值或IC50值未知，则需要在更广泛的范围尝试抑制剂的使用浓度，并采用Michaelis-Menten动力学计算Ki值。一般设立溶解抑制剂时所采用的溶剂作为对照，以排除溶剂的非特异性影响。

3. 体内实验时需要注射多少抑制剂或者刺激药物呢?
需要通过一些经验性的预实验来获得试剂的优化剂量。首要考虑是这种试剂必须具备细胞穿透性。检索报道过的IC50值，ED50值或EC50值也非常必要。以下介绍一个抑制剂用量的常用估算方法:
注射量(μg)=IC50(nM)×5~10×分子量×体重(g)×体液占体重的百分数(%)×10-6
以H-89(一种二氢氯化物)为例。这是一种细胞穿透性蛋白激酶A抑制剂，IC50值为48nM，分子量是 519.3，240-480nM可以产生足够的蛋白激酶A的抑制效果。活体(in vivo)实验时我们还需要做一些估算。假定一只200g的大鼠含水量为70%，则抑制剂约在140ml中分布;这样240nM =240nmoles/L= 124.63μg/L。抑制剂溶于140ml，即124.63×0.140 = 17.45μg，所以这只200g的大鼠需要注射的剂量为17.45μg。
同时，抑制剂在体内的实际分布与注射方式(静脉注射，肌肉注射还是腹腔注射?) 药物利用率，半衰期，肝肾清除率，与蛋白的结合，组织特异性分布与富集等等紧密相关。特定组织或器官吸收抑制剂的量也往往比分离的细胞吸收量少。在整个活的动物体上的研究，常常要求抑制剂达到一定的目标浓度的负荷剂量，因此也需要通过持续给药以保持血液中相应的抑制剂浓度。做这类实验必须特别小心，以免在动物上用药过量。